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測定意義：

二磷酸核酮糖羧化酶（EC 4.1.1.39）是植物光合作用中的一個關鍵酶，既控制著CO2的固定，同時又制約著碳素向Calvin循環(huán)和光呼吸循環(huán)分流，其活性的大小直接影響著光合速率。

測定原理：

（1）在Rubisco的催化下，1分子的核酮糖-1，5-二磷酸（RuBP）與1分子的CO2結合，產生2分子的3-磷酸甘油酸（PGA）；（2）PGA可通過外加的3-磷酸甘油酸激酶和甘油醛-3-磷酸脫氫酶的作用，產生甘油醛-3-磷酸，伴隨著NADH氧化生成NAD+；（3）在340 nm NADH有特征吸收峰，而NAD+沒有此吸收峰，因此測定340nm吸光度下降速率可以代表Rubisco的羧化酶活性。

組成：

SH0519-25T/24S試劑二：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入12.5ml試劑一，充分混勻待用；用不完的SH0519-25T/24S試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

SH0519-25T/24S試劑三：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入12.5ml試劑一，充分混勻待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

SH0519-25T/24S試劑四：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入1.25 ml試劑一，充分溶解待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

SH0518-50T/48S試劑二：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入25ml試劑一，充分混勻待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

SH0518-50T/48S試劑三：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入25ml試劑一，充分混勻待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

SH0518-50T/48S試劑四：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入2.5 ml試劑一，充分溶解待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融；

（注意：試劑二、三、四溶解后，按需分裝-20℃保存。）

自備儀器和用品：

可見-紫外分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1ml石英比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

粗酶液制備：

①總Rubisco酶提?。?/span>建議稱取約0.1g樣本，加入1ml提取液一，冰浴勻漿后超聲破碎（冰浴，200W，破碎3s，間歇7s，總時間1min），然后4℃，8000g離心10min，取上清測定。

②胞漿和葉綠體Rubisco酶的分離：按照植物組織質量（g）：提取液體積(ml)為1：5～10的比例（建議稱取約0.1g樣本，加入1ml提取液一），冰浴勻漿后于4℃，200g離心5min，棄沉淀，取上清在4℃，8000g離心10min，取上清用于測定胞漿Rubisco酶活性，取沉淀加1ml提取液二，震蕩溶解后超聲破碎（冰浴，200W，破碎3s，間歇7s，總時間1min），然后4℃，8000g離心10min，取上清測定葉綠體中Rubisco酶活性。

建議測定總Rubisco酶活性，按照步驟①提取粗酶液，若需要分別測定胞漿和葉綠體中的Rubisco，則按步驟②提取粗酶液。

（照注意：粗酶液制備過程中超聲破碎操作使用細胞破碎儀進行。）

測定步驟：

1、 分光光度計預熱30min以上，調節(jié)波長至340nm，蒸餾水調零。

2、 樣本測定

（1） 工作液的配制：臨用前將試劑二和試劑三1：1混合，用多少配多少；

（2） 在1ml石英比色皿中加入50ul樣本、50ul試劑四和900ul工作液，混勻，立即記錄340nm處20s時吸光值A1和5min20s時的吸光值A2，計算ΔA=A1-A2。

Rubisco活性計算：

1、按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：25℃中1 mg蛋白1 min氧化1 n mol NADH。

 Rubisco（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V樣×Cpr) ÷T =643×ΔA÷Cpr

此法需要測定粗酶液中蛋白質濃度，建議選購本公司生產的BCA蛋白質濃度測定試劑盒。

2、按樣本鮮重計算

單位的定義：25℃中1 g組織1 min氧化1 nmol NADH。

 Rubisco（nmol/min/g 鮮重）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V樣÷V樣總×W) ÷T=643×ΔA÷W

上述計算公式中各符合含義：

V反總：反應體系總體積，1×10^-3 L；ε：NADH摩爾消光系數(shù)，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.05 ml；V樣總：加入提取液體積，1ml；T：反應時間，5 min；W：樣本質量，g。